Respuestas de foro creadas

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  • en respuesta a: Evaluación del volumen #1827
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: Evaluación del volumen
    de Almudena Alb… – lunes, 13 de junio de 2011, 11:12
    Hola, a nosostros nos ha pasado lo mismo. Rescatamos una balanza de banco de sangre que no se usaba, la preparamos y pesamos botes vacios de los que normalmente se dan a los pacientes, las pesadas repetian muy bien (n=10). Para nuestra sorpresa el volumen por pesada no tenía nada que ver con los que damos midiendo por transferencia a tubos graduados. De momento solo lo hemos comprobado en 3 muestras y ninguna de las 3 coincide para nada, es más ni se aproximan. No sé que estamos haciendo mal. Me gustaría que nos ayudarais a encontrar el problema.
    Re: Evaluación del volumen
    de Tutor CEIFER… – lunes, 13 de junio de 2011, 13:33
    Hola a todos

    La OMS asume que la densidad del semen no es 1. Pero basándose en estudios que realizan algunos autores se demuestra que el valor medido se aproxima más al valor verdadero cuando se hace por pesada que por transferencia.
    Con lo cual es lógico que no os coinciden y no tenéis ningún problema, salvo que estáis comparando dos métodos distintos entre éllos, sin tener el valor verdadero, o sea un patrón con un valor conocido.
    Saludos
  • en respuesta a: postvasectomizados #1700
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: postvasectomizados
    de Tutor CEIFER… – miércoles, 8 de junio de 2011, 18:00

    Hola a todos

    El tratamiento preanalítico es el mismo

    Saludos

  • en respuesta a: Espermatogénesis (tema 3) #1619
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: Espermatogénesis (tema 3)
    de Tutor CEIFER… – jueves, 26 de mayo de 2011, 11:38
    Hola a todos

    Un testículo no puede suplir la producción del otro, puesto que la espermatogénesis dura 72 días.
    Ya se ha intentado durante años dar FSH a los varones con oligozoospermia y lo único que se consiguió fué engordar las arcas de las farmaceuticas. Salvo claro esta, deficit de esta hormona, o sea un hipogonadismo hipogonadotrópico (vaya nombrajo).
    saludos
    Re: Espermatogénesis (tema 3)
    de Marta Galleg… – jueves, 26 de mayo de 2011, 22:43

    Hola, gracias por la respuesta entiendo que un testículo no puede suplir la producción del otro, pero en cuanto a los niveles hormonales, exceptuando el hipogonadismo, ¿tambien la testosterona se verá disminuida en cantidad? ¿y la inhibina?

    gracias, un saludo

    Re: Espermatogénesis (tema 3)
    de Tutor CEIFER… – viernes, 27 de mayo de 2011, 11:02
    Hola a todos

    En teoria se deberán compensar ya que el mecanismo hormonal funciona como feedback negativo. Testosterona como inhibina actúan sobre el hipotálamo y Adenohipófisis y regulando de esta forma la producción de FSH y LH.
    En cualquier caso dejadme que me ilustre sobre que ha ocurrido en casos donde ha sido extirpado un testículo.
    Y si alguien lo sabe que nos ilustre
    Saludos
    Re: Espermatogénesis (tema 3)
    de Marta Galleg… – martes, 31 de mayo de 2011, 22:24

    Muchas gracias por la respuesta y por favor si obtiene esa información me gustaría conocerla para entender mejor el tema.

    Gracias.

  • en respuesta a: parámetros de la evaluación inicial #1830
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    Tutor CEIFER Biobanco
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    Re: parámetros de la evaluación inicial
    de Tutor CEIFER… – miércoles, 25 de mayo de 2011, 18:19

    Hola a todos

    1- No debe aparecer

    2- La OMS lo considera dentro de los procedimientos estandar y recomienda se hagan de rutina

    3- Yo no soy capaz de establecer ese grado. En cualquier caso como he indicado antes se recomienda hacerlo de rutina ya que puede no haber aglutinaciones y haber anticuerpos y viceversa.

    Saludos

  • en respuesta a: Manual para el laboratorio #1480
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: Manual para el laboratorio

    de Tutor CEIFER Fo… – lunes, 23 de mayo de 2011, 19:44

    Hola a todos

    Por ahora sólo existe versión en inglés

    Saludos

  • en respuesta a: conservación de las muestras #1836
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: conservación de las muestras
    de Tutor CEIFER… – domingo, 22 de mayo de 2011, 07:21
    Hola a todos

    Lo lógico sería mantenerla a tª ambiente tras realizar la observación inicial.
    saludos
    Re: conservación de las muestras
    de Delia Aceved… – lunes, 23 de mayo de 2011, 12:44

    Carmen, yo conservo las muestras a Tª ambiente una vez he empezado a trabajarlas, como dice el tutor; lo que hago es atemperar en la estufa las camaras previamente al contaje, ya que no dispongo de microscopio termostatizado, como supongo que la mayoría de compañeros. Es que cambiar ahora un Nikon de contraste de fases estupendo que tengo por otro con la platina termostatizada no va a poder ser.

    Un saludo

    Re: conservación de las muestras
    de Carmen Blanc… – miércoles, 25 de mayo de 2011, 17:35

    Delia, respecto a lo de dejar las cámaras de recuento dentro de la estufa, creo que da igual si las dejas dentro o fuera, el recuento no hay que hacerlo a una tª determinada, y por otra parte, entre la dilución que se hace y el tiempo de reposo en cámara húmeda se van a enfriar.

    saludos.

    Re: conservación de las muestras
    de Ana Luisa Ma… – domingo, 5 de junio de 2011, 03:48
    Relativamente as amostras para tratamentos. Será necessário colocar a 37ºC para a primeira avaliação? O facto de colocar a 37ºC não irá contribuir para uma aumento de fragmentação de DNA dos espermatozóides?!
    Re: conservación de las muestras
    de Tutor CEIFER… – domingo, 5 de junio de 2011, 08:04
    Olá a todas, olá Ana luisa

    É gratificante para todos compartilhar este curso com os nossos colegas Português.

    O manual da OMS é um método de avaliação, não focada em tratamentos de fertilidade. Mas parece claro que o que mais afeta a fragmentação do DNA é esperado para amostra, uma vez preparados, depois de REM.
    Saudações

    O sea, que lo que más afecta a la muestra en relación a la fragmentación de DNA es el tiempo de espera una vez preparada
  • en respuesta a: VISCOSIDAD #1833
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: VISCOSIDAD
    de Tutor CEIFER… – sábado, 21 de mayo de 2011, 07:37
    Hola a todos

    No tengo experiencia con esos vasos, aunque he oido hablar mucho de éllos. Seguramente la acción será similar a la bromelina y se podrán usar pero teniendo en cuenta las limitaciones de usar sólo para concentración.
    Saludos
    Re: VISCOSIDAD
    de Guillermo Ri… – sábado, 21 de mayo de 2011, 12:41
    Para la viscosidad aumentada y la licuefacción retrasada yo utilizo un truco que no siempre funciona pero que la mayoría me aligera mucho el trabajo, consiste en “romper” la viscosidad mecanicamente.

    Yo lo hago de dos maneras:
    1.- Pego la punta de la pipeta al culo del vaso de la muestra, dejando un espacio muy pequeño por el que puede salir la muestra. La mayoría de las veces con esto es suficiente para que la muestra deje de estar viscosa
    2.- Si no es suficiente, con una jeringa y una abuja de diametro 0’5micras (ahora no recuerdo si son micras o no, no me machaqueis por esto!) recogo la muestra y al pasar por el capilar de la jeringa varias veces la viscosidad de la muestra se “rompe”.

    A mi es un truco que me va muy bien.

    Re: VISCOSIDAD
    de Yolanda Host… – miércoles, 1 de junio de 2011, 19:43

    Hola a todos:

    el truco que usas para la viscosidad no lo entiendo , si lo puedes explicar de otra manera estaria bien.No entiendo si aspiro la muestra por una pipeta y luego dejo caer el semen apoyado en el culo del vaso o que es lo que hay que hacer.

    gracias

    Re: VISCOSIDAD
    de Delia Aceved… – lunes, 23 de mayo de 2011, 12:39

    Lo del truco que comenta Guillermo lo voy a probar, pues es el tercer supuesto de la OMS (hacerlo mecánicamente), aunque yo la pasaba por una jeringa sin aguja, y claro, no me acababa de ir bien.

    De todas maneras el vaso Mark sólo lo uso para hallar concentración, como dice el tutor.

    Gracias

  • en respuesta a: Aclaración sobre Diapositiva 6 y 7 #1490
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    Tutor CEIFER Biobanco
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    Re: Aclaración sobre Diapositiva 6 y 7

    de Tutor CEIFER… – jueves, 19 de mayo de 2011, 10:29
    Hola a todos

    Creo que nos enfrentamos a un problema semántico, fruto también de la simplificación de los esquemas, donde intentamos clasificar en A o B sin tener en cuenta que estamos en procesos evolutivos y que entre los estadios A y B hay estadios secundarios, que podríamos llamar evolución del A o comienzo del B

    1) En el desarrollo de la espermatogénesis se produce el paso de un una espermatogonia a espermatocito preleptotene o espermatocito primario.
    Este espermatocito ha duplicado su material genético, pasando de 2n de la espermatogonia a 2nx2 del espermatocito preleptotene.
    A partir de aquí se produce la Meiosis I con sus fases de profase (leptotene, zigotene, paquitene, diplotene, diacinesis), metafase, anafase, telofase.
    Se podría considerar el espermatocito primario dentro de la fase proliferativa o dentro ya del proceso de meiosis?

    2) La barrera hematotestícular separa la zona basal de la adluminal. Dentro de la basal se encuentran las espermatogonias y espermatocitos preleptotene.
    Ahora bien el proceso es continuo. ¿como llamariamos a un espermatocito que comienza la profase? Parece que ya no es primario, ya que no es preleptotene al iniciar la leptotene ¿Pero es aún secundario? a lo mejor no porque la meiosis no ha acabado.
    Luego posiblemente a ambos lados de la barrera tengamos un espermatocito preleptotene o primario, pero en diferentes procesos evolutivo. En la barrera basal en fase preleptone clara y en la adluminal avanzando hacia leptotene, y al que podriamos llamar primario en evolución a secundario o secundario en el comienzo del desarrollo.
    Saludos
  • en respuesta a: Recepción muestra #1703
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: Recepción muestra
    de Tutor CEIFER… – viernes, 13 de mayo de 2011, 23:48
    Hola a todos

    El protocolo es el mismo
    Saludos
  • en respuesta a: Control de Calidad Interno #1702
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    Tutor CEIFER Biobanco
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    Re: Control de Calidad Interno
    de Tutor CEIFER… – viernes, 13 de mayo de 2011, 23:47
    Hola a todos

    El manual lo tienes en la página de inicio del curso. Hay un capitulo dedicado a control de calidad, tanto externo como interno.
    El desarrollo de éllos escapa al temario de este curso debido a su extensión.
    Saludos
  • en respuesta a: Recuento en cámara #1701
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: Recuento en cámara
    de Tutor CEIFER… – viernes, 13 de mayo de 2011, 23:41
    Hola a todos

    Siempre que sepas cuantos cuadrados y a cuantas filas corresponderían supongo que es correcto.
    ¿pero para que complicar el protocolo?
    Saludos
  • en respuesta a: muestra que no licúan #1839
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: muestra que no licúan
    de Tutor CEIFER… – jueves, 12 de mayo de 2011, 17:12

    Hola a todos

    1-Hay otros métodos propuestos, pero con los problemas que ya sabemos de no poder utilizarse nada más que para concentración. En cualquier caso, aunque sea viscosa por lo general se puede trabajar con ellas en análisis de semen, otra cosa sería en técnicas de REM, sobre todo para el que haga Swim-up.

    2- Personalmente me quedo con terminológia OMS que traducido es Análisis de Semen

    Saludos

    Re: muestra que no licúan
    de Beatriz Gonz… – viernes, 19 de agosto de 2011, 12:41

    En cuanto a utilizar una muestra con viscosidad elevada para técnicas de REM, comentas que desaconsejado para swim up, pero y en el caso de realizar gradientes de densidad?

    Re: muestra que no licúan
    de Tutor CEIFER… – domingo, 21 de agosto de 2011, 09:59

    Hola a todos…los que no estáis en la playa

    La viscosidad es un engorro para cualquier técnica de REM, pero sobre todo en SWIM-UP, en el que debe formarse un botón para migrar. En gradientes el engorro es menor. Siempre es deseable intentar eliminarla o disminuirla

    Saludos

  • en respuesta a: identificación del frasco de recogida #1704
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: identificación del fracso de recoguida
    de Tutor CEIFER… – lunes, 9 de mayo de 2011, 18:04

    Hola a todos

    1-Evidentemente es más preciso decir identificada en lugar de

    Cuando la muestra es entregada debe ser rotulada

    Con nombre y apellidos

    Y con el código de laboratorio

    2-La diferencia es es que en video el paciente recoge la muestra en el centro, lo cual es lo ideal. La diapo es más generalista

    3- Lo lógico es pesar luego de identificar

    Saludos

  • en respuesta a: video evaluación inicial #1842
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: video evaluación inicial
    de Tutor CEIFER… – lunes, 9 de mayo de 2011, 18:08

    Hola a todos

    Creo que sería correcto, porque no creo que 1G cambie los resultados y además siendo de más calibre no sería perjudicial para la muestra.

  • en respuesta a: pregunta del flagelo del modulo 2 #1492
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    Tutor CEIFER Biobanco
    Jefe de claves
    Re: pregunta del flagelo del modulo 2

    de Mark Grossma… – viernes, 6 de mayo de 2011, 23:01
    Querida Maria Teresa, por si puedo ayudar: en la pieza principal el axonema está conservado pero las fibras densas se modifican, disminuye su grosor y van desapareciendo (diapo 15 de tema 2.2), de manera que ya no se hallan en la pieza terminal

    Buen finde

    Mk
    Re: pregunta del flagelo del modulo 2

    de Tutor CEIFER… – sábado, 7 de mayo de 2011, 12:57
    Hola a todos

    Gracias Mark, te nombro “tutor honorario” a partir de ahora.
    Saludos

    Re: pregunta del flagelo del modulo 2

    de Mark Grossma… – lunes, 9 de mayo de 2011, 19:01
    Jajaja.

    Gracias por el honor (¿¿¿será por las canas???) pero no os fiéis: esta duda yo la tenía clara, la próxima quizás meta la pata hasta el fondo.

    Saludos

    Mk

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